服务优势

技术团队均发表过SCI,主持/参与过国家自然科学基金和省科技厅重点项目、擅长设计优化实验方案、
拥有完善的数据安全体系和最严格的保密措施、全程实验记录和真实可靠的实验数据。

尼罗红染色

来源:组织病理学研究平台

实验原理

  • 尼罗红不溶于水,可溶于多种有机溶剂并发出荧光,对甘油三酯,胆固醇脂具有高亲和力,在疏水环境中是最理想的脂质荧光染料;尼罗红也可以和磷脂结合,使细胞膜着色;也可染色其它疏水分子如疏水蛋白等。

样本处理

  1. 冷冻切片: (1)4%组织细胞固定液固定 10min。 (2)蒸馏水洗 3 次,每次 3min。
  2. 培养细胞固定: (1)4%组织细胞固定液固定 10min。 (2)蒸馏水洗 3 次,每次 3min。
  3. 活细胞:用无血清和白蛋白的培养基洗涤细胞,除去血清和白蛋白。

染色步骤

  1. 尼罗红染色工作液准备:临用前,将尼罗红脂肪荧光染色液(500X)于离心机 1200rpm 离心 2min, 根据需要吸取适量染色液,用 PBS 缓冲液或无血清和白蛋白的培养基以 1:500 一次性稀释即为尼罗红染色 工作液。
  2. 固定细胞:入尼罗红染色工作液,染色 5-10 分钟,蒸馏水洗涤一次,立即观察。(选择恰当的染色时间避免背景染色,一般情况下,染色时间>30 分钟,背景弥散强)
    活细胞:将尼罗红脂肪荧光染色液(500X)直接加入无血清培养液中(建议稀释比例 1:500),染色 5-10 分钟,收集细胞,用 PBS 洗涤一次,立即观察。

染色结果

  1. 用 365nm 波长激发,细胞核为蓝色,脂滴为黄色(图 C)
  2. 用 492-577nm 波长激发,细胞呈红色,且无变形(图 B)
  3. 用 435nm 波长激发,细胞呈绿色,分辨率高(图 A)

案例展示

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